Quality_control/README.md

#中华家系1号标准物质室间质评报告系统分析流程

> Author： Run Luyao
> 
> E-mail：18110700050@fudan.edu.cn
> 
> Git: http://choppy.3steps.cn/renluyao/Quality_control.git
> 
> Last Updates: 30/8/2019

## 安装指南
```
# 激活choppy环境
source activate choppy
# 安装app
choppy install renluyao/Quality_control
```

## App概述——中华家系1号标准物质介绍
建立高通量全基因组测序的生物计量和质量控制关键技术体系，是保障测序数据跨技术平台、跨实验室可比较、相关研究结果可重复、数据可共享的重要关键共性技术。建立国家基因组标准物质和基准数据集，突破基因组学的生物计量技术，是将测序技术转化成临床应用的重要环节与必经之路，目前国际上尚属空白。中国计量科学研究院与复旦大学、复旦大学泰州健康科学研究院共同研制了人源中华家系1号基因组标准物质（**Quartet，一套4个样本，编号分别为LCL5，LCL6，LCL7，LCL8，其中LCL5和LCL6为同卵双胞胎女儿，LCL7为父亲，LCL8为母亲**），以及相应的全基因组测序序列基准数据集（“量值”），为衡量基因序列检测准确与否提供一把“标尺”，成为保障基因测序数据可靠性的国家基准。人源中华家系1号基因组标准物质来源于泰州队列同卵双生双胞胎家庭，从遗传结构上体现了我国南北交界的人群结构特征，同时家系的设计也为“量值”的确定提供了遗传学依据。

中华家系1号DNA标准物质的标称值包括高置信单核苷酸变异信息、高置信短插入缺失变异信息和77.9-78.1%的高置信参考基因组区。该系列标准物质可以用于评估基因组测序的性能，包括全基因组测序、全外显子测序、靶向测序，如基因捕获测序；还可用于评估测序过程和数据分析过程中对SNV和InDel检出的真阳性、假阳性、真阴性和假阴性水平，为基因组测序技术平台、实验室、相关产品的质量控制与性能验证提供标准物质和标准数据。

该Quality_control APP用于全基因组测序（whole-genome sequencing，WGS）数据的质量评估，包括原始数据质控、比对数据质控和突变检出数据质控。


## 流程与参数
![](./pictures/workflow.png)

###1. 原始数据质量控制

#### [Fastqc](<https://www.bioinformatics.babraham.ac.uk/projects/fastqc/>)

FastQC是一个常用的测序原始数据的质控软件，主要包括12个模块，具体请参考[Fastqc模块详情](<https://www.bioinformatics.babraham.ac.uk/projects/fastqc/Help/3%20Analysis%20Modules/>)。

```bash
fastqc -t <threads> -o <output_directory> <fastq_file>
```

#### [Fastq Screen](<https://www.bioinformatics.babraham.ac.uk/projects/fastq_screen/>)

Fastq Screen是检测测序原始数据中是否引⼊入其他物种，或是接头引物等污染，⽐比如，如果测序样本
是⼈人类，我们期望99%以上的reads匹配到⼈人类基因组，10%左右的reads匹配到与⼈人类基因组同源性
较⾼高的⼩小⿏鼠上。如果有过多的reads匹配到Ecoli或者Yeast，要考虑是否在培养细胞的时候细胞系被污
染，或者建库时⽂文库被污染。

````bash
fastq_screen --aligner <aligner> --conf <config_file> --top <number_of_reads> --threads <threads> <fastq_file>
````

`--conf` conifg 文件主要输入了多个物种的fasta文件地址，可根据自己自己的需求下载其他物种的fasta文件加入分析

`--top`一般不需要对整个fastq文件进行检索，取前100000行

``

###2. 比对后数据质量控制

#### [Qualimap](<http://qualimap.bioinfo.cipf.es/>)

```bash
qualimap bamqc -bam <bam_file> -outformat PDF:HTML -nt <threads> -outdir <output_directory> --java-mem-size=32G 
```

###3. 突变检出数据质量控制

#### [Hap.py](<https://github.com/Illumina/hap.py>)

```bash
hap.py <truth_vcf> <query_vcf> -f <bed_file> --threads <threads> -o <output_filename>
```

#### [Jaccard index](<https://en.wikipedia.org/wiki/Jaccard_index>)

```bash
rtg vcfeval -b <one_vcf> -c <another_vcf> -o <output_directory> -t <sdf_file>
```

#### [VCF statistics](<https://github.com/RealTimeGenomics/rtg-tools>)

```bash
rtg vcfstats <vcf_file>
```

## App输入变量与输入文件
准备inputSamplesFIle (tsv格式)

```bash
#fastq_read1	#fastq_read2	#bam	#bai	#vcf	#sample_mark

```



## App输出文件


## 结果展示与解读
GSEA结果解读示例：

> ### 1. Enrichment score（ES）
>
> ES是GSEA最初的结果，反应全部杂交data排序后，在此序列top或bottom富集的程度。
> ES原理：扫描排序序列，当出现一个功能集中的gene时，增加ES值，反之减少ES值，所以ES是个动态值。最终ES的确定是讲杂交数据排序序列所在位置定义为0，ES值定义为距离排序序列的最大偏差.
> - ES为正，表示某一功能gene集富集在排序序列前方
> - ES为负，表示某一功能gene集富集在排序序列后方。
> 图中的最高点为此通路的ES值，中间表示杂交数据的排序序列。竖线表示此通路中出现的芯片数据集中的gene。
>
> ### 2. NES
> 
> 由于ES是根据分析的数据集中的gene是否在一个功能gene set中出现来计算的，但各个功能gene set中包含的gene数目不同，且不同功能gene set与data之间的相关性也不同，因此，比较data set在不同功能gene set中的富集程度要对ES进行标准化处理，也就是NES
> NES=某一功能gene set的ES/数据集所有随机组合得到的ES平均值
> NES是主要的统计量。
> 
> ### 3. FDR
> 
> NES确定后，判断其中可能包含的错误阳性发现率。FDR=25%意味着对此NES的确定，4次可能错  1次。GSEA结果中，高亮显示FDR<25%的富集set。因为从这些功能gene中最可能产生有意义的假设，促进进一步研究。大多数情况下，选FDR<25%是合适的，但是，假如分析的芯片data set较少，选择的是探针随机组合而不是表型组合，若p不严格，那么应该选FDR<5%。一般而言，NES绝对值越大，FDR值就越小，说明富集程度高，结果可靠。
> 
> ### 4. 名义p值 nominal p-value
> 
> 描述的是针对某一功能gene子集得到的富集得分的统计显著性，显然，p越小，富集性越好。
> 
> **以上4个参数中，只有FDR进行了功能gene子集大小和多重假设检验矫正，而p值没有，因此，如果结果中有一个高度富集的功能gene子集，而其有很小的名义p-value和大的FDR意味着富集并不显著。**
> 
> 我的一个具体结果解读：
> 
> > 92/681 gene sets are  upregulated in PH
> > 0 gene sets are significantly enriched at FDR<25%
> > 1 gene sets are significantly enriched at n p-value <1%
> > 1 gene sets are significantly enriched at n p-value <5%
> 
> 在选择的BP中，有681个gene sets，92个PH中上调，其中75%的正确率支持0条子集上调，1个BP的gene表达上调名义p值<0.01。总体结果并不理想。
> 
> ### 5. 备注
> 
> #### GSEA富集结果太少说明：
> 
> 无gene set被富集。可能是因为分析的样本太少，关注的生物信息太微弱，或正在分析的功能集不能很好代表你所关心的生物过程，但仍然可以看下top ranked gene sets，这些信息可能会为你的假说提供微弱的证据。当然也可以尝试考虑分析其他gene sets，或增加samples
> 
> #### GSEA富集结果太多说明：
> 
> 太多的功能子集被富集了。可能是因为很多的gene sets代表同一生物信号，这可以在gene sets中查看leading edge sbusets来查看。或者也可以查看具体区别进行加工，比如samples来自不同labs，操作者不一样等。

## CHANGELOG
**Version 1.0 - Auguest 30, 2019**

- 完成PGx常规质控流程的choppy APP

## FAQ
**1. RNAseq和甲基化的质控流程？**

可查询multiqc支持的质控模块 <https://multiqc.info/docs/#multiqc-modules>

RNAseq和甲基化的质控流程待完善

**2. 如果样本没有技术重复，该APP中的inputJIpiarsFile是怎么输入的？**

在Version 1.0中暂时还没有考虑没有技术重复的问题，可输入姐妹、父母、父女、母女的配对，计算同卵双胞胎、亲属关系和陌生人之间基因突变位点的一致性。