YaqingLiu 3 лет назад
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# NGS Check mates
### NGSCheckMate
A C program, ngscheckmate_fastq, can be directly called to generate a VAF file from one FASTQ file (single-end sequencing) or two FASTQ files(paired-end sequencing).

> Author: Ren Luyao
>
> E-mail: 18110700050@fudan.edu.cn
>
> Git: http://choppy.3steps.cn/renluyao/NGScheckMates.git
>
> Last Updates: 2019/02/08

```bash
source activate choppy
choppy install renluyao/NGScheckMates
```

# APP概述

NGScheckMates是用来检测某几个测序数据是否来自于同一个人,有以下几种应用场景:

(1)多组学研究,RNAseq和DNAseq是否是来自同一个人;

(2)被标注为配对的Tumor和Normal样本是否是来自同一个人;

(3)同一批样本,多次测序,其中有没有被标错的样本。

推荐直接用fastq模式,优点:如果有多种不同测序文件,比如一个项目中有WES和RNAseq,你要研究WES找到的候选突变是否影响了基因表达量的改变,你需要检查WES和RNAseq的数据是否来自同一个人,以确保分析结果的正确性。直接用fastq模式可以不用单独对RNAseq call germline mutation,以节省时间。这一步将单独运行一个脚本。

基于fastq文件检查样本的配对情况的原理是:他们首先从dbSNP数据库中选择了21067个位于外显子上的SNP用于预测样本配对。对于不用比对的fastq模式,他们在参考基因组中寻找了可以与参考基因组完全匹配的21bp长度的k-mer,位于这些k-mer上的SNP只剩下了11696个。然后用k-mer扫描fastq文件,计算每个SNP的VAF,再根据多个SNP的VAF计算样本间两两的相关性判断两个样本是否来源于一个人。

![](./picture/NGSMateCheck.png)

# 流程与参数

- Required arguments

`-l` 需要检测的fastq或者fastq.gz文件的表格,格式如下:

```bash
FASTQ_FILE1 (tab) FASTQ_FILE2 (tab) SAMPLE_NAME (\n)
Example:
/data/LSJ_R1.fastq /data/LSJ_R2.fastq LSJ
/data/LSH_R1.fastq /data/LSH_R2.fastq LSH
```

`-pt` 是一个包含SNP位点的二进制文件,这些位点可以用与样本的配对检查,在下载包中,路径为`SNP/SNP.pt`

`-O` 输出文件夹

- Optional arguments

`-N` 输出文件夹的前缀,default:“output”

`-f` 当你的样本中有父母与孩子或者兄弟姐妹时,加上这个参数,使用更严格的VAF相关系数的阈值

`-nz` Use the mean of non-zero depths across the SNPs as reference depth, default: Use the mean depth across all the SNPs
Then, another script, vaf_ncm.py is used to read a set of VAF files to complete the downstream analysis. When you need to analyze many FASTQ files, the first VAF file generation using ngscheckmate_fastq can be parallelized.
### Getting Started

We recommend using choppy system and Aliyun OSS service. The command will look like this:


`-s` The read subsampling rate, default: 1.0

`-d` The target depth for read subsampling. NGSCheckMate calculates a subsampling rate based on this target depth.

`-R` The length of the genomic region with read mapping (default: 3x10^9) used to compute subsampling rate. If your data is NOT human WGS and you use the -d option, it is highly recommended that specify this value. For instance, if your data is human RNA-seq, the genomic length with read mapping is ~3% of the human genome (1x10^8)

注意:如果你的fastq文件特别大,它的计算会特别慢,三个参数的使用可以通过subsampling的方法加快运算速度,文献中报道只要0.5X深度的数据就能有很好的预测效果,有两种选择:

- 只使用 -s ,意思是fastq原始文件的百分之多少,如果你的fastq文件太大,运算速度很比较慢,可以使用其中一部分数据运算,不会影响运算结果,比如,30%就是`-s 0.3`
- 需要通过使用-d 和-R



`-L` The length of the flanking sequence of the SNPs, default: 21bp. It is not recommended that you change this value unless you create your own pattern file (.pt) with a different length.

`-p` 线程数,default:1

# APP输入变量与输入文件

(1)准备样本文件

```bash
choppy samples NGScheckMates --output samples
```
# Activate the choppy environment
$ open-choppy-env

samples文件中输入是

- fastq_dir

fastq文件的地址,阿里云上的地址;如果需要使用多个项目的fastq文件,输入两个项目文件夹的上一级共同目录

- Input_file
# Install the APP
$ choppy install YaqingLiu/NGSCheckMate_parallel-latest [-f]

一个txt文件,需要进行计算的文件的详细文件名,文件的地址按照要求修改

```bash
#read1 #read2 #sample_name
/cromwell_inputs/*/directory_name/read1.fastq.gz /cromwell_inputs/*/directory_name/read2.fastq.gz sample_name
```

# APP输出结果
# List the parameters
$ choppy samples YaqingLiu/NGSCheckMate_parallel-latest [--no-default]

# Submit you task with the `samples.json file` and `project name`
$ choppy batch YaqingLiu/NGSCheckMate_parallel-latest samples.json -p Project [-l project:Label]

# Query the status of all tasks in the project
$ choppy query -L project:Label | grep "status"
```

# 结果展示与解读
#### samples.json
``` json
{
"sample_id": "test",
"fastq1": ["fq1_1", "fq1_2", ..., "fq1_n"],
"fastq2": ["fq2_1", "fq2_2", ..., "fq2_n"],
"output_id": ["out_id1", "out_id2", ..., "out_idn"]
}
```

#### subsampling rate
The default subsampling rate is 0.3.

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